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nombre común: la escama lobada de laca
nombre científico: Paratachardina pseudolobata (=lobata) Kondo & Gullan (Insecta: Hemiptera: Sternorrhyncha: Coccoidea: Kerriidae)

Introducción - Descripción y Biología - La familia de los insectos de laca - Los efectos sobre las plantas hospedantes - Rango de plantas hospedantes - Expansión potencial en la distribución - Prospectos para el manejo de la plaga - Referencias seleccionadas - English Version

Introducción

Una especie de insecto de escama que es nueva en la Florida es potencialmente una de las plagas más devastadoras de arboles y arbustos en la historia del estado. La escama lobada de laca, Paratachardina pseudolabata Kondo & Gullan (Hemiptera: Sternorrhyncha: Coccoidea: Kerriidae), un insecto de escama nativo de la India y Sri Lanka, se encontró por primera vez en la Florida en agosto de 1999 por personal del Departamento de Agricultura y Servicios para Consumidores, División de Industria de Plantas (DIP)(Hamon 2001). La identificación de la especie por Avas Hamon de DIP fue confirmada por D. R. Miller del laboratorio de Entomología Sistemática, Departamento de Agricultura de los Estados Unidos, Beltsville, Maryland. Este registro fue sobre hibisco (Hibiscus rosa-sinensis) en el pueblo de Davie (Condado de Broward). La planta fue destruida por el personal del DIP.

Hembras maduras de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.

Figura 1. Hembras maduras de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan. Fotografía por F. W. Howard, University of Florida.

Las plantas en la vecindad a esta planta infestada fueron inspeccionadas sin encontrar P. pseudolobata. Sin embargo, la especie fue encontrada otra vez en el 2000 sobre un caucho (Ficus benjamina) en Davie, sobre icaco (Chrysobalanus icaco) en Weston (Condado de Broward), y sobre icaco en dos sitios en Miami (Condado de Miami-Dade). En el 2001, la especie de insecto de escama se encontró en 11 sitios en el condado de Broward y en seis sitios en el Condado de Miami-Dade. En diciembre del 2001, los inspectores del DIP encontraron P. pseudolobata en Lake Worth (Condado de Palm Beach). A partir de octubre del 2002, P. pseudolobata se ha registrado en sitios desde Lake Worth al norte hasta Homestead (Condado de Miami-Dade) en el sur, esto es, una distancia de 128 km, y desde la costa hasta 28 km al interior. Después de encontrarse este insecto de escama en la Florida, unos ejemplares de la misma especie fueron encontrados en la Colección Estatal de la Florida de Artrópodos los cuales fueron colectados en 1992.

Descripción y biología

Las hembras adultas de P. pseudolobata, con la escama miden alrededor de 1.5-2.0 mm de largo y casi lo mismo de ancho. La escama tiene dos pares de lóbulos prominentes. Al ojo experto, la forma de 'X' de este insecto de escama es apreciable, hasta sin magnificación. La escama es extremamente dura y quebradiza, lustrosa y de un color granate-castaño, pero frecuentemente está cubierta por una capa de fumagina por lo cual aparece ser de un color negro-opaco. La hembra de la escama lobada de laca, como es el caso con cóccidos en general, se desarrolla durante dos instares, y muda al tercer estadio, lo cual es la hembra adulta. Los primeros instares son ovalados-alargados y alrededor de 0.4 mm de largo. La forma pseudolobata característica se desarrolla en el segundo instar, y es más pronunciada en la adulta. No se han observado los machos de esta especie en la Florida.

Primer instar de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.

Figura 2. Primer instar de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan. Fotografía por F. W. Howard, University of Florida.

Como las hembras adultas de los insectos de escama no tienen alas, no juegan ningún papel en la dispersión de poblaciones para ocupar nuevas plantas hospedantes. Los insectos de escamas dependen en dispersión pasiva del primer instar vía corrientes de aire. Foresis (transporte por pájaros y otros animales) puede ser de alguna importancia en algunas especies. Sin duda, el movimiento de plantas hospedantes infestadas entre áreas urbanas es un factor clave para la dispersíon los insectos de escama.

La familia de los insectos de laca

La escama lobada de laca pertenece a la familia de cóccidos de laca, Kerriidae, la especie mejor conocida de la cual es el verdadero cóccido de laca, Kerria lacca (Kerr). La escama de este se ha utilizado para hacer goma laca y productos similares. Pero la mayoría de especies de esta familia, incluyendo P. pseudolobata, no producen ningún material de valor comercial. El nombre científico especifico, pseudolobata, se refiere a las cuatro proyecciones prominentes, o lóbulos, de esta escama, y el nombre vernáculo, 'escama lobada de laca' puede ser aplicado a esta especie.

De las 28 familias de insectos de escama (súperfamilia Coccoidea) reconocidas por Miller y Ben-Dov (2002), 11 son representadas por especies las cuales son nativas a la Florida (Aclerdidae, Asterolecaniidae, Diaspididae, Cerococcidae, Coccidae, Conchaspidae, Eriococcidae, Kermesidae, Margarodidae, Ortheziidae, y Pseudococcidae.) No hay ninguna especie de Kerriidae nativa de la Florida y tierras adyacentes. La familia Kerriidae está limitada sobre todo a las latitudes tropicales, con una minoría de especies presentes en áreas desérticas de baja latitud. De las 87 especies descritas, 64 se encuentran en el Hemisferio Oriental. De las especies nativas del Hemisferio Occidental, 13 son registradas para América del Sur, seis para México (dos de las cuales son registradas para el suroeste de los Estados Unidos), tres registradas solamente en el suroeste de los EE.UU. y una especie en Jamaica (Ben-Dov 2002).

Los efectos sobre las plantas hospedantes

Paratachardina pseudolobata se ha encontrado sobre todo infestando plantas leñosas dicotiledóneas. Infesta las ramitas y ramas pequeñas y los troncos de menos de 2 cm de diámetro. No se ha encontrado sobre follaje.

Ramita de palo de cera infestada de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.

Figura 3. Ramita de palo de cera infestada de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan. Fotografía por F. W. Howard, University of Florida.

Sobre las plantas hospedantes altamente susceptibles, los insectos de escamas estan abarrotados, formando una masa contigua la cuál aparece como una costra oscura llena de bultos. Se han contado hasta 19 hembras maduras por 100 mm2 en ramitas de palo de cera (Myrica cerifera), una planta hospedante altamente susceptible. Infestaciones densas se asocian con la muerte de ramas de algunas especies de plantas; en casos severos, arbustos y árboles pequeños altamente infestados se han muerto. El palo de cera está especialmente propenso a tener infestaciones densas y morir por los efectos de la escama pseudolobata. Algunas especies de plantas parecen tolerar las infestaciones densas, pero eso puede ser ilusorio, pues todavía no se saben los efectos de tales infestaciones a largo plazo.

Fumagina sobre hojas de mango, resultado indirecto de una infestaciĆ³n de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.

Figura 4. Fumagina sobre hojas de mango, resultado indirecto de una infestación de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan. Fotografía por F. W. Howard, University of Florida.

Palo de cera en bosque natural (izquierda) y como cerca viva (derecho), muertos por causa de infestaciones de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.

Figura 5. Palo de cera en bosque natural (izquierda) y como cerca viva (derecho), muertos por causa de infestaciones de la escama lobada de laca, Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan. Fotografía por F. W. Howard, University of Florida.

Rango de plantas hospedantes de la escama

Este insecto de escama se ha encontrado solamente sobre plantas dicotiledóneas, sobre una especie conífera (enebro rojo del sur, Juniperus silicicola) y sobre una palma (palma datilera miniatura, Phoenix roebelenii). A partir de octubre del 2002, más de 120 especies en 44 familias de plantas leñosas han sido identificadas como plantas hospedantes en la Florida (Cuadros 1 & 2). Estas incluyen 39 especies nativas a la Florida. La mayoría de las plantas hospedantes exóticas se cultivan como árboles o arbustos ornamentales, o como árboles frutales. Algunas de estas especies son sumamente importantes en los paisajes urbanos como árboles de sombra, árboles ejemplares, o cercas vivas. Algunas familias de plantas, notablemente Fabaceae, Myrtaceae, y Moraceae, son bien representadas por especies que sirven como plantas hospedantes, pero eso puede estar relacionado con su abundancia en el paisaje o debido a otro prejuicio. Las plantas en diferentes sitios han sido expuestas a las infestaciones por diferentes períodos, y por eso, los niveles de infestación son variables. Diferencias en susceptibilidad no han sido determinadas en experimentos. Sin embargo, ciertas especies parecen ser altamente susceptibles, incluyendo algunas especies nativas, e. g., palo de cera, icaco (Chrysobalanus icaco), mangle botón (Conocarpus erectus), higüero estrangulador (Ficus aurea), myrsine (Myrsine guianensis), laurel rojo (Persea borbonia), y café-silvestre (Psychotria nervosa); plantas ornamentales exóticas, e. g., ucar (Bucida buceras), laurel de la India (Ficus microcarpa), caucho (F. benjamina); y árboles frutales, e. g., lychee (Litchi chinensis), mango (Mangifera indica), y carambola (Averrhoa carambola).

Ramita de mango infestada de la escama lobada de laca,Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan.

Figura 6. Ramita de mango infestada de la escama lobada de laca,Paratachardina pseudolobata Kondo & Gullan. Fotografía por F. W. Howard, University of Florida

Table 1. Host list of lobate lac scale in southern Florida

(from Howard et al. 2006).
(* indicates species native to Florida)

Angiosperms: dicotyledons

Acanthaceae
Graptophyllum pictum (L.)
Justicia brandegeana Wasshausen & L. B. Smith
Pachystachys lutea Nees
Ruellia brittoniana E. Leonard

Aceraceae
*Acer rubrum L.

Anacardiaceae
Mangifera indica L.
Metopium toxiferum (L.) Krug & Urban
Pseudospondias microcarpa (A. Richard) Engler
Rhus copallinum L.
Schinus molle L.
Schinus terebinthifolius Raddi
Spondias mombin L.
Toxicodendron radicans (L.) Kuntze

Annonaceae
Annona cherimola Miller X A. squamosa L.
*Annona glabra L.
Annona muricata L.
Annona reticulata L.
Annona squamosa L.
Cananga odorata (Lamarck ) J. D. Hooker & T. Thomson

Aquifoliaceae
Ilex cassine L.
*Ilex vomitoria Aiton

Araliaceae
Schefflera actinophylla (Endlicher) Harms
Schefflera elegantissima (Veitch ex Masters) Lowry & Frodin

Asteraceae
Ambrosia artemisiifolia L.
*Baccharis halimifolia L.
Bidens alba (L.) de Candolle
Flaveria linearis Lagasca
Montanoa grandiflora Alaman ex de Candolle
Pluchea carolinensis (Jacquin) G. Don
Tridax procumbens L.
Verbesina virginica L.

Begoniaceae
Begonia sp.

Bignoniaceae
Amphitecna latifolia (Miller) A. Gentry
Dolichandrone spathacea (L. f.) Schumann
Tecoma stans (L.) Humboldt, Bolpland and Kunth
Tecoma capensis (Thunberg) Spach

Burseraceae
*Bursera simaruba (L.) Sargent

Capparaceae
*Capparis cynophallophora L.

Caprifoliaceae
Viburnum sp.

Casuarinaceae
Casuarina cunninghamiana Miguel
Casuarina equisetifolia L.

Celtidaceae
*Celtis laevigata Willdenow
*Trema micranthum (L.) Blume

Chrysobalanaceae
*Chrysobalanus icaco L.
Licania tomentosa (Bentham) Fritsch

Clusiaceae
Calophylum brasiliense Cambessédes
Calophyllum calaba L.
Calophyllum inophyllum L.
Clusia lanceolata Cambessèdes
*Clusia rosea Jacquin
Garcinia mestonii F.M.Bailey
Garcinia prainiana King
Mesua ferrea L.
Rheedia acuminata (Ruiz & Pavon) Planchon & Triana
Rheedia aristata Grisebach
Rheedia sp.
Rheedia edulis (Seemann) Triana et Planchon
Rheedia macrophylla Planchon & Triana

Combretaceae
Bucida (B.spinosa x buceras)
Bucida buceras L.
Combretum aubletii de Candolle
Combretum obovatum F. Hoffmann
*Conocarpus erectus L.
Laguncularia racemosa (L.) Gaertner f.
Terminalia muelleri Bentham
Terminalia catappa L.

Ebenaceae
Diospyros digyna Jacquin
Diospyros mespiliformis Hochstetter

Elaeocarpaceae
Elaeocarpus decipiens Hemsley

Erythoxylaceae
Erythoxylum reticulatum

Euphorbiaceae
Acalypha godseffiana Sander ex Mast
Acalypha hispida Burman f.
Acalypha wilkesiana J. Mueller
Antidesma bunius (L.) K. Sprengel
Antidesma dallachyanum Baillon
Antidesma platyphyllum Hame
Bridelia monoica (L.) Merrill
Chamaesyce hirta L.
Euphorbia leucocephala Lotsy
Flueggea acidoton (L.) G. L. Webster
Jatropha integerrima Jacquin
Mallotus philippinensis (Lamarck) Mueller Argoviensis

Fabaceae
Acacia auriculiformis Bentham
Acacia choriophylla Bentham
Acacia farnesiana (L.) Willdenow
Albizia lebbek (L.) Bentham
Amorpha herbacea (Walt.) var crenulata (Rydb.)Isely
Archidendron lucyi F. v. Mueller
Bauhinia sp.
Brya ebenus (L.) de Candolle
Butea monosperma (Lamarck) Taubert
Caesalpinia pulcherrima (L.) Swartz
Caesalpinia violacea (Miller) Standley
Cajanus cajan (L.) Huth
Calliandra emarginata (Humboldt & Bonpland) Bentham
Calliandra haematocephala Hasskarl
Calliandra surinamensis Bentham
Dalbergia ecastaphylum (L.) Taubert
Dalbergia sissoo de Candolle
Dalea carthagenensis (Jacq.) J.F. Macbride
Gigasiphon macrosiphon (Harms) Brenan
Inga affinis de Candolle
Inga edulis (Martius)
Leucaena leucocephala (Lamarck) de Wit
Lonchocarpus sp.
*Lysiloma latisiliqua (L.) Bentham
Lysiloma sabicu Bentham
Parmentiera aculeata (Kunth) Seemann
Peltophorum pterocarpum (de Candolle) K. Heyne
Pithecellobium flexicaule (Bentham) J.M. Coulter
Pithecellobium keyense ex Britton & Rose
Pongamia pinnata (L.) Pierre
Pseudosamanea cubana Britton & Rose (Barneby & Grimes)
Samanea saman (Jacquin) Merrill
Wallaceodendron celebicum Koorders

Fagaceae
*Quercus geminata Small
Quercus hemiphaerica Bartram Ex Willdenow
Quercus incana W. Bartram
*Quercus laurifolia Michaux
*Quercus virginiana Miller

Flacourtiaceae
Banara vanderbiltii Urban
Casearia arguta Humboldt, Bonpland & Kunth
Dovyalis hebecarpa (G. Gardner) Warburg

Lamiaceae
Leonotis leonurus (L.) R. Brown
Leonotis nepetifolia (L.) R. Brown
Ocimum sp.
Rosmarinus officinalis L.
Salvia coccinea P.J. Buchoz ex Etlinger
Solenostemon scutellarioides (L.) Codd

Lauraceae
Cinnamomum zeylanicum Blume
Laurus nobilis L.
*Licaria triandra (Swartz) Kostermans
Ocotea coriacea (Swartz) Britton (Lauraceae)
Persea americana Miller
*Persea borbonia (L.) Sprengel
Persea palustris (Rafinesque-Schmaltz) Sargent

Lecythidaceae
Lecythis minor Jacquin

Lythraceae
Ginoria glabra Grisebach
Ginoria nudiflora (Hemsley) Koehne
Lagerstroemia indica L.
Lagerstroemia speciosa (L.) Persoon (Lythraceae)
Lawsonia inermis L.

Magnoliaceae
Magnolia virginiana L.
Michelia champaca L.

Malvaceae
Abutilon sp.
Durio testudinarium
Heritiera littoralis Dryander
Hibiscus rosa-sinensis L.
Hibiscus schizopetalus (Masters) Hooker f.
Hibicus tiliaceus L.
Malvaviscus penduliflorus de Candolle
Pavonia bahamensis Hitchcock
Pavonia paludicola D. H. Nicolson
Ruizia cordata Cavanilles
Trichospermum mexicanum (de Candolle) Baillon
Urena lobata L.

Melastomataceae
Tetrazygia bicolor (Miller) Cogniaux

Meliaceae
Lansium domesticum Corrêa da Serra

Moraceae
Brosimum alicastrum Swartz
Ficus aspera G. Forster
*Ficus aurea Nuttall
Ficus benjamina L.
Ficus capensis Thunberg
Ficus citrifolia Miller
Ficus deltoidea Jack
Ficus elastica L.
Ficus microcarpa L. f.
Ficus natalensis Hochstetter
Ficus nota (Blanco) Merrill
Ficus pertusa L.
Ficus pumila L.
Ficus racemosa L.
Ficus rubiginosa Desfontaines ex Ventenat
Ficus rumphii Blume
Ficus salicifolia (Vahl) Berg
Ficus subcordata Blume
Ficus virens Aiton

Myricaceae
*Myrica cerifera L.

Myrsinaceae
*Ardisia escallonioides Chamisso & Schlechtendal
Ardisia hirtella
Ardisia revoluta Humbolt, Bonfland & Kunth
Ardisia sieboldii Miquel
Rapanea punctata (Lamarck) Lundell

Myrtaceae
Callistemon viminalis (Gaertner) Cheel
*Calyptranthes pallens Grisebach
Calyptranthes thomasiana O. Berg
*Calyptranthes zuzygium (L.) Swartz
Eucalyptus bella K. D. Hill & L. A. S. Johnson
*Eugenia axillaris (Swartz) Willdenow
Eugenia brasiliensis Lamarck
*Eugenia confusa de Candolle
Eugenia foetida Persoon
Eugenia luschnathiana Klotzsch ex O. Berg
Eugenia uniflora L.
Marliera edulis Cambessedes
Melaleuca bracteata F. Mueller
Melaleuca decora (Salisbury) Britten
Melaleuca quinquenervia (Cavanilles) S.T. Blake
Mosiera longipes (O. Berg) Small
Myrcianthes fragrans
Myrciaria cauliflora (de Candolle) O. Berg in Martius
Myrciaria vexator McVaugh
Pimenta dioica (L.) Merrill
Pimenta racemosa (Miller) J. W. Moore
Psidium androsianum (Urban) Correll
Psidium guajava L.
Psidium littorale Raddi
Syzigium cuminii (L.) Skeels
Syzygium grande (Wight) Walpers
Syzygium jambos (L.) Alston
Syzygium malaccense (L.) Merrill & Perry
Syzygium paniculatum Gaertner
Syzygium samarangense (Blume) Merrill & Perry

Onagraceae
Ludwigia peruviana (L.) Hara

Orchidaceae
Dendrobium aphyllum (Roxb.) C.E.C. Fischer

Oxalidaceae
Averrhoa bilimbi L.
Averrhoa carambola L.

Piperaceae
Piper sp.

Polygalaceae
Polygala cowellii (Britton) Blake

Polygonaceae
Antipogon leptopus Hooker & Arnott
Triplaris cumingiana Fischer & C.A. Meyer ex C.A. Meyer

Proteaceae
Macadamia integrifolia Maiden & Betche
Macadamia tetraphylla L. A. S. Johnson

Rhamnaceae
*Krugiodendron ferreum (Vahl) Urban
Ziziphus mauritiana Lamarck

Rhizophoraceae
Rhizophora mangle (L.)

Roseaceae
Malus sylvestris Miller
Pyrus sp.
Rosa sp.

Rubiaceae
Erithalis fruticosa L.
Gardenia jasminoides Ellis
Gardenia thunbergia L.f.
Hamelia cuprea Grisebach
*Hamelia patens Jacquin
Ixora sp.
Mussaenda erythrophylla Schumacher & Thonning
Pentas lanceolata (Forsskal) Deflers
*Psychotria ligustrifolia (Northrup) Millspaugh
*Psychotria nervosa Swartz
Psychotria punctata Vatke
Psychotria sulzneri Small
Psychotria viridis
Randia aculeata L.
Rondeletia leucophylla Kunth
Spermacoce verticillata L.

Rutaceae
Amyris balsamifera L.
Amyris elemifera L.
Citrus X paradisi Macfadyen
Clausena lansium (Loureiro) Skeels
Evodia ridleyi Hochreutiner
Fortunella japonica (Thunberg) Swingle
Murraya paniculata (L.) Jack

Salicaceae
*Salix caroliniana Michaux

Sapindaceae
Alectryon coriaceus Radlkofer
Allophylus cominia (L.) Swartz
Blighia sapida Konig
Cupaniopsis anacardioides (A. Richard) Radlkofer
Dodonaea viscosa Jacquin
*Exothea paniculata (Jussieu) Radlkofer
Filicium decipiens (Wight & Arnott) Thwaites
Harpullia arborea (Blanco) Radlkofer
Hypelate trifoliata Swartz
Koelreuteria elegans (Seemann) A.C. Smith
Litchi chinensis Sonnerat
Melicocca bijuga L.
Talisia olivaeformis (Humbolt, Bopland & Kunth) Radlkofer

Sapotaceae
*Bumelia celastrina Humboldt, Bonpland & Kunth
Calvaria inermis
Chrysophyllum cainito L.
*Chrysophyllum oliviforme L.
*Dipholis salicifolia (L.) Alphonse de Candolle
*Manilkara jaimiqui (C. Wright) Dubard
Manilkara kauki (L.) Dubard
Manilkara pleeana (Pierre) Cronquist
Manilkara roxburghiana (Wight) Dubard
Manilkara zapota (L.) Van Royen
Mimusops balata (Aublet) Gaertner
Mimusops caffra A. de Candolle
Mimusops elengi L.
Pouteria caimito Radlkofer
Sideroxylon americanum (Miller) T. D. Penn
Sideroxylon foetidissimum Jacquin
Sideroxylon salicifolium (L.) Lam.
Synsepalum dulcificum Schumacher & Thonning

Solanaceae
Brunfelsia lactea Krug & Urban
Brunfelsia nitida Bentham
Cestrum diurnum L.
Cestrum nocturnum L.
Solanum diphyllum L.
Solanum tampicense Dunal
Solanum torvum Swartz

Sterculiaceae
Sterculia ceramica R. Brown
Pterospermum acerifolium (L.) Willdenow

Tiliaceae
Grewia occidentalis L.
Grewia occidentalis L.

Theophrastaceae
Jacquinia armillaris Jacquin
Jacquinia aurantiaca Aiton

Urticaceae
Pouzolzia zeylanica (L.) Bennett

Verbenaceae
Avicennia germinans (L.) L.
Callicarpa americana L.
Duranta erecta L.
Petrea volubilis Jacquin

Vitaceae
*Parthenocissus quinquefolia (L.) Planchon
Vitis rotundifolia Michaux

Zygophyllaceae
Guaiacum officinale L.
Guaiacum sanctum L.

Angiosperms: monocotyledons

Palmae
Phoenix roebelenii O'Brien

Gymnosperms: Coniferales

Cupressaceae
Juniperus virginiana L.

Taxodiaceae
Taxodium distichum (L.) L. Richter

Expansión potencial en la distribución

El potencial de que este insecto se disperse y ocupe aún más territorio en el hemisferio occidental es especialmente alto para áreas cálidas y donde hay importación a un nivel significante de plantas vivas desde Florida, e. g., Puerto Rico y otras localidades del Caribe, California, y Hawaii. La invasión de áreas naturales es una preocupación primordial. Un examen rápido de varios montecillos de árboles de madera dura en el Condado de Broward reveló que habían infestaciones densas en diversas especies en áreas grandes. La presencia de infestaciones densas 28 km al interior, eso es, casi en las orillas de los Everglades, implica que la vegetación de esta área natural vasta está amenazada. La mayoría de las plantas hospedantes nativas identificadas en Florida también están distribuidas en la Región Caribeña, y si el insecto fuese introducido a Puerto Rico y otros países caribeños, las áreas naturales de esta región también serían amenazadas.

Prospectos para el manejo de la plaga

No se ha publicado virtualmente nada sobre la biología y el manejo de esta especie. Esta ha llegado rápidamente a ser una plaga de mayor importancia en el sureste de la Florida, y es urgente el acelerar las investigaciones sobre ella. Raramente hemos encontrado insectos parasíticos que ataquen a P. pseudolobata, y concluimos que estos no ofrecen control biológico significante. Resultados no publicados de experimentos llevados a cabo por la Universidad de Florida, Centro de Investigaciones y Enseñanza de Fort Lauderdale, mostraron que un remojo de las raíces con el insecticida imidacloprid controló efectivamente a P. pseudolobata infestando árboles grandes de caucho (Ficus benjamina). Estudios adicionales se llevan a cabo para refinar este método, y para hacer pruebas de la efectividad de aceites parafínicos además de otros métodos químicos. Como se pronostica que un alto porcentaje de árboles y arbustos llegarán a estar infestados con este insecto en áreas urbanas al igual que en áreas naturales de la Florida, estamos investigando el control biológico como la única opción a largo plazo.

Referencias seleccionadas